Paper Award

WITec Paper Award - Senden Sie uns ihre neuesten Publikationen

Der WITec Paper Award zeichnet exzellente wissenschaftliche Publikationen aus, die in einer peer-reviewed Zeitschrift veröffentlicht wurden und Ergebnisse und/oder Bilder enthalten, die mit einem WITec-Mikroskop aufgenommen worden sind. Weltweit rufen wir Wissenschaftler auf, ihre Paper einzureichen, die sie im aktuellen Jahr (print oder online) publiziert haben.

Die Verwendung eines WITec-Mikroskops sollte in den „Material und Methoden“ oder an anderer Stelle eindeutig dokumentiert sein.

Wir überreichen dem Einsender einer eingereichten Publikation ein kleines „Danke schön“. Jeder Autor einer Publikation kann diese einreichen.

Eine WITec-Jury wird die drei besten Arbeiten auswählen, basierend auf der wissenschaftlichen Relevanz der Arbeit, der Qualität der Daten und dem Anteil der Ergebnisse, die mit WITec-Geräten erzielt wurden.

Unter allen eingereichten Arbeiten wird eine Jury die besten Arbeiten für den alljährlichen Paper Award auswählen. Der Gewinn wird dem/den Erst-Autor(en) verliehen.

Der 31. Januar des folgenden Jahres ist der Einsendeschluss.

Teilnahmebedingungen:

  1. Senden Sie Ihr Paper als PDF-Dokument an papers@witec.de und fügen Sie alle nötigen Kontaktinformationen bei.
  2. Der Einsender des Papers erhält ein kleines Geschenk von WITec.
  3. Alle eingesandten Publikationen nehmen am Wettbewerb teil. Die Erstautoren der von der Jury ausgewählten drei besten Paper erhalten einen Amazon-Gutschein.

WTC PAPER AWARD 2019

Frühere Paper Awards

2019: Publikationen können eingereicht werden!

 

2018:

  • Hesham K. Yosef, Sascha D. Krauß, Tatjana Lechtonen, Hendrik Jütte, Andrea Tannapfel, Heiko U. Käfferlein Thomas Brüning, Florian Roghmann, Joachim Noldus, Axel Mosig, Samir F. El-Mashtoly and Klaus Gerwert: Noninvasive diagnosis of high-grade urothelial carcinoma in urine by Raman spectral imaging. Analytical Chemistry 89, 6893 (2017), DOI 10.1021/acs.analchem.7b01403.
  • Marvin Gernhardt, Ling Peng, Matthias Burgard, Shaohua Jiang, Beate Förster, Holger Schmalz and Seema Agarwal: Tailoring the morphology of responsive bioinspired bicomponent fibers. Macromolecular Materials and Engineering 303, 1700248 (2017), DOI. 10.1002/mame.201700248.
  • Guanglin Yu, Yan Rou Yap, Kathryn Pollock and Allison Hubel: Characterization intracellular ice formation of lymphoblasts using low-temperature Raman spectroscopy. Biophysical Journal 112, 2653 (2017), DOI 10.1016/j.bpj.2017.05.009.

2017:

  • Maria O’Brien, Niall McEvoy, Damien Hanlon, Toby Hallam, Jonathan N. Coleman, Georg S. Düsberg: Mapping of low-frequency Raman modes in CVD-grown transition metal dichalcogenides: layer number, stacking orientation and resonant effects. Scientific Reports (2016); 6, 19476.
  • Sara Fateixa, Manon Wilhelm, Helena I.S. Nogueira, Tito Trindade: SERS and Raman imaging as a new tool to monitor dyeing on textile fibres. Journal of Raman Spectroscopy (2016); 47, 1239.
  • Jonas Higl, M. Köhler, M. Lindén: Confocal Raman microscopy as a non-destructive tool to study microstructure of hydrating cementitious materials. Cement and Concrete Research (2016); 88, 136.

2016:

  • Admir Masic and James Weaver: Large area sub-micron chemical imaging of magnesium in sea urchin teeth. J. Struct. Biol. (2015); 189, 269.
  • Fernando Rubio-Marcos, Adolfo Del Campo, Pascal Marchet and Jose F. Fernández: Ferrolectric domain wall motion induced by polarized light. Nature Communications (2015); 6, 6594.
  • Yongjun Lee, Seki park, Hyun Kim, Gang Hee Han, Young Hee Lee and Jeongyong Kim: Characterization of the structural defects in CVD-grown monolayered MoS2 using near-field photoluminescence imaging. Nanoscale (2015); 7, 11909

2015:

  • Katarzyna M. Marzec, A. Rygula, B.R. Wood, S. Chlopicki, M. Baranska. High-resolution Raman imaging reveals spatial location of heme oxidation sites in single red blood cells of dried smears. J. Raman Spectrosc. (2015); 46, 76-83. (doi: 10.1002/jrs.4600).
  • Martin J. Süess, R. A. Minamisawa, R. Geiger, K.K. Bourdelle, H. Sigg, R. Spolenak. Power-dependent Raman analysis of highly strained Si nanobridges. Nano Lett. (2014) ;14, 1249-54. (doi: 10.1021/nl404152r).
  • Chunxiao Cong and Ting Yu. Enhanced ultra-low-frequency interlayer shear modes in folded graphene layers. Nat Commun. (2014; 5, 4709. (doi: 10.1038/ncomms5709).

 2014:

  • Y. Hao, M. S. Bharathi, L. Wang, Y. Liu, H. Chen, S. Nie, X. Wang, H. Chou, C. Tan, B. Fallahazad, H. Ramanarayan, C. W. Magnuson, E. Tutuc, B. I. Yakobson, K. F. McCarty, Y. W. Zhang, P. Kim, J. Hone, L. Colombo, R. S. Ruoff, The role of surface oxygen in the growth of large single-crystal graphene on copper. Science 342, 720-723 (2013); 8 (10.1126/science.1243879).
  • F. Foucher, F. Westall, Raman imaging of metastable opal in carbonaceous microfossils of the 700-800 ma old Draken Formation. Astrobiology 13, 57-67 (2013); (10.1089/ast.2012.0889).
  • B. Kann, M. Windbergs, Chemical imaging of drug delivery systems with structured surfaces-a combined analytical approach of confocal Raman microscopy and optical profilometry. The AAPS Journal 15, 505-510 (2013); (10.1208/s12248-013-9457-7).

2013:

  • Costantini, D., Greusard, L., Bousseksou, A., Rungsawang, R., Zhang, T. P., Callard, S., Decobert, J., Lelarge, F., Duan, G.-H., De Wilde, Y., & Colombelli, R., (2012). In situ generation of surface plasmon polaritons using a near-infrared laser diode. Nano Letters, 12(9), 4693–7. doi:10.1021/nl302040e
  • Matthaeus, C., Krafft, C., Dietzek, B., Brehm, B. R., Lorkowski, S., & Popp, J. (2012). Noninvasive imaging of intracellular lipid metabolism in macrophages by Raman microscopy in combination with stable isotopic labeling. Analytical Chemistry, 84(20), 8549–56. doi:10.1021/ac3012347
  • Rubio-Marcos, F., Del Campo, A., López-Juárez, R., Romero, J. J., & Fernández, J. F. (2012). High spatial resolution structure of (K,Na)NbO3 lead-free ferroelectric domains. Journal of Materials Chemistry, 22(1), 9714–9720. doi:10.1039/c2jm30483j

2012:

  • Schmidt, D. A., Ohta, T., & Beechem, T. E. (2011). Strain and charge carrier coupling in epitaxial graphene. Physical Review B, 84(23), 235422. doi:10.1103/PhysRevB.84.235422
  • Nehrke, G., & Nouet, J. (2011). Confocal Raman microscope mapping as a tool to describe different mineral and organic phases at high spatial resolution within marine biogenic carbonates: case study on Nerita undata (Gastropoda, Neritopsina). Biogeosciences, 8(12), 3761–3769. doi:10.5194/bg-8-3761-2011
  • Xu, Y. N., Zhan, D., Liu, L., Suo, H., Ni, Z. H., Nguyen, T. T., Zhao, C., & Shen, Z. X., (2011). Thermal dynamics of graphene edges investigated by polarized Raman spectroscopy. ACS nano, 5(1), 147–52. doi:10.1021/nn101920c
  • Weber-Bargioni, A., Schwartzberg, A., Cornaglia, M., Ismach, A., Urban, J. J., Pang, Y., Gordon, R., Bokor, J., Salmeron, M. B., Ogletree, D. F., Ashby, P., Cabrini, S., Schuck, P. J., (2011). Hyperspectral Nanoscale Imaging on Dielectric Substrates with Coaxial Optical Antenna Scan Probes. Nano letters, 11, 1201–1207. doi:10.1021/nl104163m

2011:

  • Meister, K., Schmidt, D. A., Bründermann, E., & Havenith, M. (2010). Confocal Raman microspectroscopy as an analytical tool to assess the mitochondrial status in human spermatozoa. The Analyst, 135(6), 1370–4. doi:10.1039/b927012d
  • dePaula, S. M., Huila, M. F. G., Araki, K., & Toma, H. E. (2010). Confocal Raman and electronic microscopy studies on the topotactic conversion of calcium carbonate from Pomacea lineate shells into hydroxyapatite bioceramic materials in phosphate media. Micron, 41(8), 983–9. doi:10.1016/j.micron.2010.06.014
  • Harrington, M. J., Masic, A., Holten-Andersen, N., Waite, J. H., & Fratzl, P. (2010). Iron-clad fibers: a metal-based biological strategy for hard flexible coatings. Science, 328(5975), 216–20. doi:10.1126/science.1181044